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超低分子量蛋白Marker I(3.3-22 kD,5条带) ZY-P6011MA

ultra low MW protein Marker I

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超低分子量蛋白Marker I(3.3-22 kD,5条带)

英文名:ultra low MW protein Marker I

储存条件:-20°C

超低分子量蛋白Marker I用来测定SDS-PAGE上多肽和小蛋白的分子量,由3种多肽和2种低分子量蛋白质组成,分子量范围为3.3kD-22kD.5条带的大小分别为 3.3,5.8,7.8,14.8,22KD。

使用方法:

第一次收到该产品,室温融化后,彻底混匀,离心快甩将溶液完全收集到管底,根据需要适量分装成小管,-20℃贮存,每次取一小管使用。

一、制胶

(一)配置分离胶

1、按照表一将不同体积的双蒸水,40%PAA(19:1),4×凝胶缓冲液和乙二醇加入到小烧杯中混合。

2、加入10%APS和TEMED,立即混匀5-10秒,以使溶液充分混匀。

3、在凝胶模具中迅速灌入适量分离胶溶液,然后在分离胶溶液上轻轻覆盖一层1-3cm的水层,使凝胶表明保持平整。

4、静置30-60分钟,待分离胶和水层之间出现一个清晰的界面表示凝胶已聚合。

(二)配置浓缩胶

去除覆盖在分离胶上的水层,用滤纸将残留的水吸去

1、按照表一将不同体积的双蒸水,40%PAA(19:1)和凝胶缓冲液加入到小烧杯中混合。

2、加入10%APS和TEMED,立即混匀5-10秒,以使溶液充分混匀

3、将梳子插入凝胶内,避免产生气泡。

4、静置30-60分钟待凝胶聚合。

注:如非必须,不要使用1.0mm和1.5mm的凝胶,尽量使用厚度0.75mm的凝胶,这样会减少电泳后染色和脱色的时间

二、电泳

1、取一管分好的Marker样品,95℃处理5分钟,充分混匀后备用

2、将电泳槽的外槽加入1×阳极缓冲液,内槽加入1×阴极缓冲液,轻柔拨出梳子,将Marker或蛋白样品加入点样孔,80-120V电泳30-60分钟左右,待指示前沿到达离胶上沿时,把电压调至150-200V,至蓝色指示前沿至分离胶3/4位置时即可停止电泳,整个电泳过程大约需要2-3小时。(注:如果电泳时间过短,染色时,指示前沿容易遮挡小于5kd的小肽)

表二 小分子蛋白质SDS-PAGE电泳试剂配置

一、1/40%PAA(291)(配制浓缩胶)

丙烯酰胺  38.67g  甲叉双丙烯酰胺 1.33g

ddH2O溶解后定容至100ml,过滤后使用,贮存:4

二、40%PAA(191)(配制分离胶)

丙烯酰胺  38g  甲叉双丙烯酰胺 2g

ddH2O溶解后定容至100ml,过滤后使用,贮存:4

三、4×凝胶缓冲液(配制凝胶用)[3M Tris 0.3%SDS pH8.45]

Tris 182g   ddH2O  300ml   1.5gSDS15ml 10%SDS

HClpH8.45  ddH2O定容至500ml   贮存:4

四、10×阳极缓冲液[2M Tris pH 8.9] 贮存:4

 Tris   121.1g   ddH2O  400ml  HClpH值到8.9

ddH2O定容至500ml 注:使用前稀释1×阳极缓冲液使用

五、10×阴极缓冲液(上槽缓冲液)[1M tris 1M Tricine 1%SDS pH8.3]

TRIS 60.6g    Tricine  89.6g    SDS  5g

ddH2O定容至500ml  贮存:4

六、2×Tricine蛋白样品上样缓冲液(10ml1ml  1M  Tris-HCl pH6.8

2.4ml 甘油   0.8g SDS   0.31g DTT  2mg 考马斯亮蓝G-250

用灭菌ddH2O定容至10ml  混匀分装-20℃贮存备用

七、染色液  

冰醋酸  100ml  考马斯亮蓝G-250   0.25g    水  900ml

八、脱色液  

冰醋酸  100ml   水    900ml


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